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帖子主题:icu真菌感染指南手册

楼主:shaoys [2011/8/8 10:25:09]
icu真菌感染指南手册

重症加强治疗病房(ICU)患者是侵袭性真菌感染(invasive fungal infections, IFI)的高发人群,并且IFI日益成为导致ICU患者死亡的重要病因之一。为使重症医学工作者对IFI有一个全面、系统的认识,以便指导和规范我国ICU医生的医疗实践,中华医学会重症医学分会组织相关专家,依据近年来国内外研究进展和临床实践,制定出《重症患者侵袭性真菌感染诊断和治疗指南》。

一、重症患者IFI的流行病学

(一)ICU患者侵袭性真菌感染的发病率

在过去的几十年中ICU患者IFI的发病率不断增加[1],约占医院获得性感染的8~15%[2]。以念珠菌为主的酵母样真菌和以曲霉为主的丝状真菌是IFI最常见的病原菌,分别占91.4%和5.9%。在美国,念珠菌血症已跃居院内血源性感染的第四位[3]。研究显示,器官移植受者真菌感染的发病率为20%~40%,而艾滋病患者发生真菌感染的可能性高达90%。尽管抗真菌的非药物治疗措施越来越受到重视,而且不断有新的抗真菌药物问世,但IFI的发病率仍有明显升高的趋势[1-3]

(二)ICU患者侵袭性真菌感染的重要病原菌

ICU患者IFI的病原菌主要包括念珠菌和曲霉。ICU患者IFI仍以念珠菌为主,其中白念珠菌是最常见的病原菌(占40%~60%)。但近年来非白念珠菌(如光滑念珠菌、热带念珠菌、近平滑念珠菌等)感染的比例在逐渐增加

侵袭性曲霉感染的发生率也在逐渐上升,占所有IFI的5.9%~12%[4]。曲霉多存在于潮湿阴暗且缺乏通风的环境中,其孢子飘浮于空气中而易于被病人吸入。曲霉属最常见的是烟曲霉、黄曲霉及黑曲霉,焦曲霉和土曲霉较少见。另外赛多孢霉属、镰孢霉属、接合菌中的根霉属和毛霉属的感染率也有所增加[5]

(三)ICU患者侵袭性真菌感染的病死率

ICU患者IFI的病死率很高,仅次于血液系统肿瘤患者[6]

侵袭性念珠菌感染的病死率达30%~60%[3],而念珠菌血症的粗病死率甚至高达40%~75%[2],其中光滑念珠菌和热带念珠菌感染的病死率明显高于白念珠菌等其它念珠菌。

尽管ICU患者侵袭性曲霉感染发生率低,但其病死率高,是免疫功能抑制患者死亡的主要原因。

(四)ICU患者侵袭性真菌感染的高危因素

在ICU 中,IFI除了可发生于存在免疫抑制基础疾病或接受免疫抑制治疗的患者,更多的则是发生在之前没有免疫抑制基础疾病的重症患者,这与疾病本身或治疗等因素导致的免疫麻痹/免疫功能紊乱有关[7-15]

与其它科室的患者相比,ICU患者最突出的特点是其解剖生理屏障完整性的破坏。ICU患者往往带有多种体腔和血管内的插管,且消化道难以正常利用,较其他患者具有更多的皮肤、粘膜等解剖生理屏障损害,因此使得正常定植于体表皮肤和体腔粘膜表面的条件致病真菌,以及环境中的真菌易于侵入原本无菌的深部组织和血液。

ICU患者IFI高危因素主要包括:①ICU患者病情危重且复杂;②侵入性监测和治疗手段的广泛应用;③应用广谱抗菌药物;常合并糖尿病、COPD、肿瘤等基础疾病;皮质激素和免疫抑制剂在临床上的广泛应用;器官移植广泛开展;肿瘤化疗/放疗、HIV感染等导致患者免疫功能低下;⑧ICU诊治手段不断提高,使重症患者生存时间和ICU住院时间延长[3]

二、IFI常见病原真菌的特点

引起IFI的病原体可分为两类:真性致病菌和条件致病菌。前者仅由少数致病菌组成,主要包括组织胞浆菌和球孢子菌,它们可侵入正常宿主,也常在免疫功能低下病人中引起疾病。在免疫功能受损的病人中,由真性致病菌所致的感染常为致命性的。条件致病菌主要包括念珠菌和曲霉,多侵犯免疫功能受损的宿主。念珠菌、曲霉、隐球菌和毛霉是最常见引起IFI的病原菌。

(一)致病性念珠菌

念珠菌是最常见的一类条件致病菌,常见的致病性念珠菌(假丝酵母菌)有:白念珠菌、热带念珠菌、近平滑念珠菌、光滑念珠菌、克柔念珠菌、季也蒙念珠菌和葡萄牙念珠菌。

    念珠菌培养产生酵母样菌落。显微镜下,除光滑念珠菌外,大部分念珠菌在玉米吐温琼脂培养基上均可产生假菌丝及芽孢,白念珠菌还可产生厚膜孢子。在37℃血清中培养2~3h,可长出芽管,是重要的实验室鉴别特征。

念珠菌广泛存在于自然界中,大多无致病性。作为人体的正常菌群,只有在机体防御机制受损时才会引起疾病。其毒力由多种因素决定,包括念珠菌与组织的黏附性、念珠菌酵母相-菌丝相的双相性等,同时念珠菌感染与机体防御功能密切相关。

(二)致病性曲霉

曲霉为条件致病菌,致病性曲霉的种群主要包括烟曲霉、黄曲霉和土曲霉等。曲霉的鉴定主要还是依赖形态学特征:通常以菌落形态和分生孢子头的颜色进行群的划分;然后以分生孢子的形态、颜色,产孢结构的数目,顶囊的形态以及有性孢子的形态等进行种的鉴定。强调培养条件的标准化,常用的培养基为察氏琼脂或察氏酵母浸膏琼脂。

曲霉孢子约2~5μm大小,易在空气中悬浮。吸入孢子后可引起曲霉病,肺和鼻窦最易受累,依据宿主的免疫状态可产生多种不同的临床类型。在免疫功能正常个体,曲霉可成为过敏原或引起肺或鼻窦的限局性感染;在免疫功能严重受损患者,曲霉可在肺部或鼻窦处大量生长,然后播散至身体其它器官。

(三)致病性隐球菌

隐球菌属中新生隐球菌是最常见的致病菌,它包括两个变种,即新生隐球菌新生变种和格特变种。前者广泛分布于世界各地,常存在于鸽粪等鸟类的排泄物中,几乎所有的艾滋病患者并发的隐球菌感染都是由该变种引起。后者主要分布于热带、亚热带地区,可从桉树中分离到。

    新生隐球菌培养产生奶油色酵母样菌落,显微镜下可见到球形或椭圆形酵母细胞,直径2~5μm,第一代培养物有时可见小的荚膜。脑脊液直接涂片,可见到隐球菌的酵母细胞有较宽的荚膜。  

健康人对该菌有免疫力,只有当机体抵抗力降低时,病原菌才易于侵入人体致病。该菌最常侵犯中枢神经系统,也可引起严重的肺部病变,其主要感染途径为呼吸道。隐球菌病好发于艾滋病(AIDS)、糖尿病、晚期肿瘤、系统性红斑狼疮(SLE)、器官移植等患者。

(四)双相真菌

双相真菌是指在人体和37℃条件下产生酵母相,而在27℃条件下产生菌丝

相的一类真菌,为原发性病原真菌。主要包括申克孢子丝菌、马内菲青霉、荚膜组织胞浆菌、粗球孢子菌、副球孢子菌、皮炎芽生菌。除孢子丝菌病多为皮肤外伤后感染外,其它真菌主要由呼吸道感染,但绝大多数感染者无症状,为自限性疾病,少数患者可发展为严重的系统性损害。

(五)致病性接合菌

接合菌纲包括毛霉目和虫霉目。其中毛霉目的致病菌主要包括毛霉、根霉、根毛霉和犁头霉。虫霉目的致病菌有蛙粪霉和耳霉,主要通过微小外伤和昆虫叮咬而感染。

接合菌可引起接合菌病。毛霉目所致感染最为常见,又称毛霉病。其发病有多种易感因素,如高血糖、代谢性酸中毒、大剂量应用皮质类固醇激素、白细胞减少等。大多数患者通过吸入空气中毛霉孢子而感染,其次是食入或外伤致病,肺和鼻窦最常受累。

(六)卡氏肺孢子菌

卡氏肺孢子菌主要引起肺部感染,称为卡氏肺孢子虫肺炎(Pneumocystis carinii pneumonitis,PCP)。主要见于艾滋病和免疫功能受损患者。

关于卡氏肺孢子菌的分类学地位,迄今仍有争议。近年来分子生物学研究显示卡氏肺孢子菌与真菌有平均60%的相似性, 而与原虫只有20%的相似性,支持卡氏肺孢子菌为真菌的观点。该菌目前尚不能在体外培养获得,主要依靠直接涂片六胺银染色诊断。PCR技术可作为辅助诊断手段。

三、IFI定义

侵袭性真菌感染系指真菌侵入人体组织、血液,并在其中生长繁殖引致组织损害、器官功能障碍和炎症反应的病理改变及病理生理过程。对于重症患者侵袭性真菌感染的定义尚无统一定论,危险(宿主)因素,临床特征以及微生物检查构成了此定义的基础。

四、重症患者IFI的诊断

重症患者IFI的诊断分3个级别,即确诊、临床诊断、拟诊。

IFI的诊断一般由危险(宿主)因素、临床特征、微生物学检查、组织病理学四部分组成。组织病理学仍是诊断的“金标准”。

(一)确诊IFI

1、深部组织感染

正常本应无菌的深部组织经活检或尸检证实有真菌侵入性感染的组织学证据;或除泌尿系、呼吸道、副鼻窦外正常无菌的封闭体腔/器官中发现真菌感染的微生物学证据(镜检/培养或特殊染色)[16]

2、真菌血症

血液真菌培养阳性,并排除污染。

3、导管相关性真菌血症

对于深静脉留置的导管行体外培养,当导管尖(长度5cm)半定量培养菌落计数>15CFU,或定量培养菌落计数>102 CFU,且与外周血培养为同一致病菌,并除外其它部位的感染可确诊[17-18]。若为隧道式或抗感染导管,有其特殊的定义,可参见相应的导管相关性感染指南。

(二)临床诊断IFI

至少符合1项危险(宿主)因素,具有可能感染部位的1项主要或2项次要临床特征,并同时具备至少1项微生物学检查的阳性结果。

(三)拟诊IFI

至少符合1项危险(宿主)因素,具备1项微生物学检查的阳性结果,或者具有可能感染部位的1项主要或2项次要临床特征。

(四)诊断IFI的参照标准

1、危险(宿主)因素:

(1)无免疫功能抑制的基础疾病的患者经抗生素治疗72-96小时仍有发热等感染征象,并满足下列条件之一的属于高危人群

① 患者因素:

a、老年(大于65岁)、营养不良、肝硬化、胰腺炎、糖尿病、COPD等肺部疾病、肾功能不全、严重烧伤/创伤伴皮肤缺损、肠功能减退或肠麻痹等基础情况[6,19-24]

b、存在念珠菌定植,尤其是多部位定植或某一部位持续定植[18,25,26]

持续定植指每周至少有2次在非连续部位的培养显示阳性;多部位定植指同时在≥2个部位分离出真菌,即使菌株不同。

若有条件,高危患者2次/周筛查包括胃液、气道分泌物、尿、口咽拭子、直肠拭子5个部位,标本进行定量培养,计算阳性标本所占的比例。当定植指数(CI)≥0.4或校正定植指数(CCI)≥0.5时有意义。对于CI的诊断阈值为口咽/直肠拭子标本培养≥1 CFU/mL、胃液/尿≥102 CFU/mL、痰≥ 104CFU/mL;对于CCI则需口咽/直肠拭子标本培养≥102 CFU/mL;胃液/尿/痰≥105 CFU/mL[27-28]

② 治疗相关性因素
a、各种
侵入性操作

机械通气>48小时、留置血管内导管、留置尿管、气管插管/气管切开、包括腹膜透析在内的血液净化治疗等[26-32]

b、药物治疗:

长时间使用3种或3种以上抗菌药物(尤其是广谱抗生素)、多成分输血、全胃肠外营养、任何剂量的激素治疗等[29,32-39]

c、高危腹部外科手术:

包括下列情况:消化道穿孔>24小时、反复穿孔、存在消化道瘘、腹壁切口裂开、有可能导致肠壁完整性发生破坏的手术及急诊再次腹腔手术等[22,29,40-41]

(2)存在免疫功能抑制的基础疾病的患者(如:血液系统恶性肿瘤、HIV感染、骨髓移植/异基因造血干细胞移植、存在移植物抗宿主病等),当出现体温>38℃或<36℃,满足下列条件之一的属于高危人群

① 存在免疫功能抑制的证据,指有以下情况之一[13,42-45]

a、中性粒细胞缺乏(<0.5×109/L)且持续10天以上;

b、之前60天内出现过粒缺并超过10天;

c、之前30天内接受过或正在接受免疫抑制治疗或放疗(口服免疫抑制剂>2周或静脉化疗>2个疗程);

d、长期应用糖皮质激素(静脉或口服相当于强的松0.5mg/kg/d以上>2周)。

② 高危的实体器官移植受者,[46-51]

a、肝移植伴有下列危险因素:

再次移植、术中大量输血、移植后早期(3天内)出现真菌定植、较长的手术时间、肾功能不全、移植后继发细菌感染等。

b、心脏移植伴有下列危险因素:

再次手术、CMV感染、移植后需要透析、病区在2个月内曾有其他患者发生侵袭性曲霉感染等。

c、肾移植伴有下列危险因素:

年龄>40岁、糖尿病、CMV感染、移植后伴细菌感染、术后出现中性粒细胞减少症等。

d、肺移植伴有下列危险因素

术前曲霉支气管定植、合并呼吸道细菌感染、CMV感染、皮质类固醇治疗等。

③ 满足上述在无免疫功能抑制的基础疾病患者中所列的任一条危险因素。

2、临床特征:

(1)主要特征:存在相应部位感染的特殊影像学改变的证据。

如:侵袭性肺曲霉感染(IPA)的影像学特征包括:早期胸膜下密度增高的结节实变影;光晕征(Halo sign);新月形空气征(air-crescent sign);实变区域内出现空腔等。是否出现上述典型影像学特征,取决于基础疾病的种类、病程所处的阶段、机体的免疫状态,ICU中大部分无免疫功能抑制的患者可无上述典型的影像学表现[14,52-54]

(2)次要特征满足可疑感染部位的相应症状、体征、至少一项支持感染的实验室证据(常规或生化检查)三项中的两项[55]。如:

① 呼吸系统:

近期有呼吸道感染症状或体征加重的表现(咳嗽、咳痰、胸痛、咯血、呼吸困难、肺内湿罗音等);呼吸道分泌物检查提示有感染或影像学出现新的、非上述典型的肺部浸润影。

② 腹腔:

具有弥漫性/局灶性腹膜炎的症状或体征(如:腹痛、腹胀、腹泻、肌紧张、肠功能异常等),可有或无全身感染表现;腹腔引流管、腹膜透析管或腹腔穿刺液标本生化或常规检查异常。

③ 泌尿系统:

具有尿频、尿急或尿痛等尿路刺激症状;下腹触痛或肾区叩击痛等体征,可有或无全身感染表现;尿液生化检查及尿沉渣细胞数异常(男性WBC>5个/HP,女性>10个/HP);对于留置尿管超过7天的患者,当有上述症状或体征并发现尿液中有絮状团块样物漂浮或沉于尿袋时也应考虑。

④ 中枢神经系统:

具有中枢神经系统局灶性症状或体征(如:精神异常、癫痫、偏瘫、脑膜刺激征等);脑脊液检查示生化或细胞数异常,而未见病原体及恶性细胞。

血源性:

当出现眼底异常、心脏超声提示瓣膜赘生物、皮下结节等表现而血培养阴性时,临床能除外其它的感染部位也要高度怀疑存在血源性真菌感染[18,56-57]

3、微生物学检查

所有标本应为新鲜、合格标本。其检测手段包括传统的真菌涂片、培养技术以及新近的基于非培养的诊断技术。包括:

(1)血液、胸腹水等无菌体液隐球菌抗原阳性;

(2)血液、胸腹水等无菌体液直接镜检或细胞学检查发现除隐球菌外的其它真菌(镜检发现隐球菌可确诊);

(3)未留置尿管情况下,连续2份尿样培养呈酵母菌阳性或尿检见念珠菌管型;

(4)直接导尿术获得的尿样培养呈酵母菌阳性(念珠菌尿>105CFU/ml);

(5)更换尿管前后两次获得的两份尿样培养呈酵母菌阳性(念珠菌尿>105 CFU/ml)

(6)气道分泌物(包括经口、气管插管、BAL、PSB等手段获取的标本)直接镜检/细胞学检查发现菌丝/孢子或真菌培养阳性;

(7)经胸、腹、盆腔引流管/腹膜透析管等留取的引流液直接镜检/细胞学检查发现菌丝/孢子或真菌培养阳性;

(8)经脑室引流管留取的标本直接镜检/细胞学检查发现菌丝/孢子或培养阳性;

(9)血液标本半乳甘露聚糖抗原(GM)或β-1,3-D葡聚糖(G试验)检测连续两次阳性[14,50,58]

五、重症患者IFI的预防

(一)一般预防

积极进行原发病治疗,尽可能保护解剖生理屏障,减少不必要的侵入性操作。已经存在解剖生理屏障损伤或进行了必要的有创操作后,应注意积极保护并尽早恢复屏障的完整。例如尽早拔除留置的导管,减少静脉营养的应用时间,早日转化为肠内营养等;对于具有免疫功能抑制的患者,需要促进免疫功能的恢复。

加强对于ICU环境的监控,进行分区管理,建设隔离病房。严格执行消毒隔离制度、无菌技术操作规程、探视制度及洗手制度等,减少交叉感染的几率。病房、仪器、管路等进行定期严格的消毒,尽可能减少灰尘,避免污水存留,并加强病房的通风。此外,尚需对医护人员及病人家属加强卫生宣教力度,开展医院感染监控,了解侵袭性真菌在当地的病种及其流行状况。

推荐意见1:预防侵袭性真菌感染首先需要进行原发病治疗,尽可能保护并早期恢复解剖生理屏障。(E级)

推荐意见2:预防侵袭性真菌感染需要加强ICU环境的监控。(E级)

(二)靶向预防

对于存在免疫功能抑制的患者,预防用药可以减少其尿路真菌感染的发生,同时呼吸道真菌感染和真菌血症的发生率也表现出下降趋势[59]

ICU中,以下具有免疫功能抑制的患者需要进行预防治疗,其中包括有高危因素的粒缺患者[45],接受免疫抑制治疗的高危肿瘤患者;具有高危因素的肝移植和胰腺移植患者[45,60-61];高危的HIV感染患者[45]

对于存在免疫功能抑制的患者,预防治疗应当持续到完全的免疫抑制治疗过程结束,或者持续到免疫抑制已经出现缓解[46]

推荐意见3:对于免疫功能抑制的重症患者应该进行抗真菌药物预防治疗。(A)

ICU中部分患者,例如机械通气超过48小时,预期的ICU停留时间超过72小时;吻合口漏;感染性休克[28]的患者等,均为IFI的高危人群,研究显示出预防治疗的优势。但近期荟萃分析显示,预防性用药虽然降低了真菌感染的发生率,但未能改善预后,同时存在出现耐药和花费增加的问题[62]

因为IFI的预防用药存在有不可避免的副作用,过度使用又会出现耐药危险,尚需进行更大规模的实验来明确预防用药的获益人群。

推荐意见4:对于ICU中无免疫抑制的患者一般不进行抗真菌药物预防治疗。( C)

(三)预防性抗真菌药物种类的选择

氟康唑对于预防大部分非光滑、非克柔的念珠菌感染能够起到有益的作用,通常使用口服氟康唑400mg/d,部分研究建议首剂加倍(800mg)。当肌酐清除率低于25ml/min,剂量降至200mg/d[63]。氟康唑静脉使用剂量成人为200-400 mg/d [64-66]

伊曲康唑的抗菌谱广,可以扩展到曲霉和非白念珠菌。预防治疗通常使用伊曲康唑口服液400mg/d或静脉注射液200mg/d。为减少口服液的胃肠不良反应,可在初始几天使用伊曲康唑胶囊和口服液联合应用的方法,或者短期应用静脉注射液后转换为口服制剂[67]

预防性应用伏立康唑可减少肺移植患者和异基因骨髓干细胞移植等患者曲霉感染的发生[68-69],但一级和二级预防的研究尚在进行中。

棘白菌素类,例如卡泊芬净和米卡芬净,用于IFI的预防是有效而安全的,通常卡泊芬净和米卡芬净的剂量为50mg iv qd[70-71]

两性霉素B脱氧胆酸盐因其输注相关反应和肾毒性,故一般不适合应用于预防治疗。有研究显示了小剂量的两性霉素B(0.2mg/kg/d)有益的预防作用 [72]。目前常以两性霉素B脂质体作为替代。研究表明危重肝移植患者应用两性霉素B脂质体可减少曲霉感染的发生率,累积剂量为11.5g,如果同时接受肾脏替代治疗,剂量可用到5mg/kg/d [73-75]。近年西班牙学者汇总了五项两性霉素B脂质体应用于肝移植患者的研究,结果显示预防真菌感染的用药剂量通常为5mg/kg/d[76],有较好的疗效。

氟胞嘧啶的抗菌谱相对狭窄,同时它有明显的毒副作用,且单药使用易出现耐药,不作为预防药物推荐使用。

六、重症患者IFI的治疗

(一)抗真菌治疗原则

由于真菌感染的复杂性,目前多提倡分层治疗,包括预防性治疗、经验性治疗、抢先治疗及目标性治疗[77]

1、经验性治疗

针对的是拟诊IFI的患者,在未获得病原学结果之前,可考虑进行经验性治疗。药物的选择应综合考虑可能的感染部位、病原真菌、患者预防用药的种类及药物的广谱、有效、安全性和效价比等因素。

关于经验性治疗的研究目前主要集中在持续发热的中性粒细胞减少症患者[78]。对于这类患者应用唑类[79-83]、棘白菌素类[84]及多烯类药物[85],临床症状改善明显。

推荐意见5:对于拟诊IFI的重症患者,应进行经验性抗真菌治疗。(E级)

2、抢先治疗

针对的是临床诊断IFI的患者。对有高危因素的患者开展连续监测,包括每周2次胸部摄片、CT扫描、真菌培养及真菌抗原检测等。如发现阳性结果,立即开始抗真菌治疗,即抢先治疗。它的重要意义在于尽可能降低不恰当的经验性治疗所导致的抗真菌药物的不必要使用,降低真菌耐药及医疗花费增加的可能性。现有的关于抢先治疗与经验性治疗比较的研究显示,患者存活率无差异,经验性治疗的花费和应用的抗真菌药物相对更多[86-87]

抢先治疗有赖于临床医生的警觉性及实验室诊断技术的进步。目前建立在非培养基础上的微生物学方法处在最前沿。新的血清学诊断方法,包括半乳甘露聚糖检测、β-D-葡聚糖检测以及对于真菌特异DNA的PCR技术,与临床征象、微生物培养,尤其是CT扫描一起,为开始抢先治疗、监测疾病的病程和评价治疗的反应提供了更多的参考价值。抢先治疗药物选择可参考所检测到的真菌种类而定。治疗应足量、足疗程,以免复发[88]

推荐意见6:对于ICU中临床诊断IFI的患者建议进行抢先治疗,同时进一步寻找病原学证据。(E级)

推荐意见7:对于ICU中侵袭性真菌感染的高危患者,应开展连续监测,避免不恰当的经验性治疗,尽可能实施抢先治疗。(C级)

3、目标治疗

针对的是确诊IFI的患者。针对真菌种类进行特异性抗真菌治疗。以获得致病菌的药敏结果为依据,采用有针对性的治疗,也可适当根据经验治疗的疗效结合药敏结果来调整给药。药物选择要参考药物抗菌谱、药理学特点、真菌种类、临床病情和患者耐受性等因素后选定。

对于微生物学证实的侵袭性念珠菌感染,主要应结合药敏结果进行用药。白念珠菌、热带念珠菌、近平滑念珠菌对氟康唑敏感,同时也可以选择其它唑类、 棘白菌素类等药物;光滑念珠菌和克柔念珠菌因为对氟康唑有不同程度的耐药,治疗时不应首选氟康唑,而应选择伊曲康唑、伏立康唑,卡泊芬净和两性霉素B及其含脂质体等。

大部分侵袭性曲霉感染的患者多为拟诊或临床诊断,少数患者能确诊。有关治疗药物的研究多集中在初始治疗[89-91]和对难治性患者的治疗[92]方面,还有联合治疗[93-94]

(二)器官功能障碍与抗真菌治疗

ICU患者是IFI的高危人群,且往往都存在多器官功能障碍或衰竭,而临床常用的抗真菌药几乎都有肝肾毒性及其它毒副作用。在抗真菌治疗过程中,如何正确选择和合理使用抗真菌药物,尽可能避免或减少器官损害,是ICU医生必须面对的难题。

1、常用抗真菌药物对器官功能的影响

两性霉素B脱氧胆酸盐抗菌谱广,临床应用广泛,但毒副作用多。使用过程中常出现高热、寒战、呕吐、静脉炎、低钾血症及肝肾功能损害等毒性反应

与两性霉素B脱氧胆酸盐相比,两性霉素B含脂制剂注射相关并发症少,肾毒性明显降低[44,95-98],肝毒性无明显差异[97,99]。其中两性霉素B脂质体的肾毒性及注射相关并发症最少[79,95,97,100-101],但两性霉素B胆固醇复合体的肾毒性发生率较高[102],寒战、发热等注射相关并发症的发生率也高于两性霉素B脂质体[91,103]

几乎所有的唑类抗真菌药都有肝脏毒性[104],但目前尚缺乏ICU患者使用唑类药物发生肝功能损害的大规模临床调查。氟康唑对肝肾功能的影响相对较小,是目前临床最常用的抗真菌药。伊曲康唑对肝肾等器官的功能有一定影响,但肾毒性明显低于两性霉素B脱氧胆酸盐[83]其引起肝损害多表现为胆汁淤积。对充血性心力衰竭或在伊曲康唑治疗中出现心衰或症状加重的患者,应重新评价使用该药的必要性。两性霉素B脱氧胆酸盐相比,伏立康唑的肝肾毒性明显减少,其肝毒性具有剂量依赖性。另外,应用伏立康唑可出现短暂视觉障碍和幻觉,一般停药后多可恢复。

以卡泊芬净、米卡芬净为代表的棘白菌素类主要在肝脏代谢,可引起肝功能的异常,肾毒性明显低于两性霉素B脱氧胆酸盐[96]。米卡芬净的不良反应与卡泊芬净类似,可导致血胆红素增高几乎不影响肾功能[105-106]

推荐意见8:抗真菌药物治疗应充分考虑基础肝肾功能状态以及药物对肝肾功能的影响。(E级)

2、肝肾功能损害时抗真菌药物的选择

(1)肝功能不全时药物的选择和剂量调整

肝功能不全患者应用唑类药物应密切监测肝功能。转氨酶轻度升高但无明显肝功能不全的临床表现时,可在密切监测肝功能的基础上继续用药;转氨酶升高达正常5倍以上并出现肝功能不全的临床表现时,应考虑停药,并应密切监测肝功能。

伊曲康唑应用于肝硬化患者时,其清除半衰期会延长,应考虑调整剂量。转氨酶明显升高、有活动性肝病或出现过药物性肝损伤的患者应慎用伊曲康唑。

轻度或中度的肝功能不全患者中,可在密切监测肝功能的情况下使用伏立康唑,第一天负荷量不变,之后维持剂量减半。目前尚无伏立康唑应用于严重肝功能障碍患者的研究。

卡泊芬净轻度肝功能障碍(Child-Pugh评分56)时不需减量中度肝功能障碍(Child-Pugh评分79)时需减量至35mg/d。目前尚无重度肝功能障碍(Child-Pugh评分>9分)患者的用药研究,若存在重度肝功能障碍应考虑进一步减量或停药。

(2)肾功能障碍或衰竭时药物的选择和剂量调整

氟康唑80%由原型经肾脏排出,肌酐清除率>50ml/min,不需调整,<50ml/min剂量减半。

伊曲康唑其赋形剂羟丙基-β-环糊精从肾脏代谢,故肌酐清除率<30ml/min时,不推荐静脉给药。口服液的生物利用度较胶囊有所提高,达53%以上,若患者肠道吸收功能尚可时可考虑改为口服用药,空腹服用可提高生物利用度。

伏立康唑其赋形剂磺丁-β-环糊精钠从肾脏代谢,故肌酐清除率<50ml/min时,不推荐静脉给药。口服制剂生物利用度达95%以上,若患者肠道吸收功能尚可,可考虑改为口服用药[5]

卡泊芬净主要在肝脏代谢,肾功能障碍患者无需调整剂量。

3、器官功能障碍时两性霉素B的使用

延长两性霉素B的输注时间可减少其肾毒性和相关的寒战、高热等毒性反应。研究证实24小时持续静脉注射或延长两性霉素B脱氧胆酸盐的输注时间,可增加患者对其耐受性,减少低钾、低镁血症的发生,并降低肾毒性[97,107-109]。另外,两性霉素B脱氧胆酸盐价格便宜,因此,24小时持续静脉注射两性霉素B脱氧胆酸盐仍可作为治疗IFI的手段[110]

推荐意见9:延长两性霉素B脱氧胆酸盐注射时间可增加患者对药物的耐受性,减少肾毒性。(C级)

应用两性霉素B时,应尽量避免合并应用有肝肾毒性的药物。非甾体类抗炎药、氨基糖苷类抗生素、造影剂、环孢霉素A、他克莫司等具有明显的肾毒性,与其合用时,可增加肾损害的危险性[97]另外,应尽量避免两性霉素B与可能存在肝功能影响的药物同时使用,以免增加肝细胞膜的通透性,出现肝脏损害[98]

在使用两性霉素B脱氧胆酸盐的过程中,如出现肾脏基础疾病恶化或血肌酐进行性升高(血肌酐>2.5 mg/dL);使用糖皮质激素及抗组胺等药物仍出现难以耐受的注射相关副作用;使用药物总量>500mg仍无效时,应考虑换药[44,97]

使用两性霉素B出现的肾功能损害,在停药后数日至数月后可逐渐恢复,永久性的肾功能衰竭少见。两性霉素B的肾毒性与两性霉素B给药剂量呈正相关[111]肾功能损害大多发生在大剂量使用两性霉素B后(总剂量大于4g)[5]多项研究显示,应用不同剂量的两性霉素B脂质体治疗IFI,疗效并无显著差异,但两性霉素B脂质体剂量越大,肾功能损害及低钾血症的发生率越高。一般认为两性霉素B脂质体3~5mg/kg/d较为适宜[112],不宜进一步增加用药剂量。

4、血液透析和血液滤过时抗真菌药物剂量的调整

血液透析和血液滤过时药物代谢及药效动力学的影响因素复杂多样,主要影响因素有药物分子量、分布容积、血浆蛋白结合率、筛过系数、室间转运速率常数和药物代谢途径(经肾脏清除的比例)、超滤率等。药物分子量越小、血浆蛋白结合率越低,则血液透析和血液滤过时清除越多;若药物筛过系数低,则血液透析和血液滤过时清除较少。

两性霉素B含脂制剂蛋白结合率高,血液滤过时不需调整剂量。氟康唑蛋白结合率低,血液透析和血液滤过时能够清除,每次透析后常规剂量给药一次。伊曲康唑的蛋白结合率99%,血液透析不影响静脉或口服伊曲康唑的半衰期和清除率,但β-环糊精可以经血液透析清除[113],故血液透析时伊曲康唑给药剂量不变,只需在血液透析前给药,以便清除β-环糊精。伏立康唑主要在肝脏代谢,血液透析和血液滤过时不需调整剂量。卡泊芬净主要在肝脏代谢,血液滤过和血液透析时亦无需调整剂量。

表1. CVVH、CVVHD及CVVHDF时抗真菌药物剂量调整[114-115]

药物名称

CVVH

CVVHD或CVVHDF

IHD

氟康唑

200~400mg q24h

400~800 mg q24h

每次血透后给药一次

伏立康唑

4mg/kg poq12h

4mg/kg poq12h

 

伊曲康唑

血液透析前给药

卡泊芬净

无需调整剂量

两性霉素B

两性霉素B脱氧胆酸盐

两性霉素脂质复合体

两性霉素B脂质体

0.4~1.0mg/kg q12h

0.4~1.0mg/kg q12h

 

3~5mg/kg q24h

3~5mg/kg q24h

3~5mg/kg q24h

 

3~5mg/kg q24h

 

注:CVVH、CVVHD及CVVHDF时,置换液、透析液均为1L/h

推荐意见10:接受血液净化的重症患者进行抗真菌治疗时,应根据药物的清除率来调整药物剂量。(D级)

(三)免疫调节治疗

对于IFI的治疗还包括免疫调节治疗。主要包括胸腺肽α1(thymosinα1)、白细胞介素(Interleukins)、粒细胞集落刺激因子(G-CSF)、粒-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)和巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF)、粒细胞输注等。免疫调节治疗的目的是增加中性粒细胞、吞噬细胞的数量,激活中性粒细胞、吞噬细胞和树突状细胞的杀真菌活性,增强细胞免疫,缩短中性粒细胞减少症的持续时间等[116]。有研究表明,免疫治疗可以改善中性粒细胞减少症的IFI患者的预后,但尚缺乏大规模随机对照研究[117]。目前关于免疫调节治疗的临床应用数据有限,大部分来自于体外动物模型研究或个案报道,故尚不被推荐作为常规治疗。

(四)外科治疗

有些IFI的情况需要进行外科手术治疗[118],例如对于曲霉肿 [119],外科摘除是明确的治疗方法;对于鼻窦感染[120-121],治疗应该联合药物和外科方法,外科清创术和引流在大多数病例中就足以治疗;对于心内膜炎患者应进行心脏瓣膜置换手术[122],并且术后要实施药物治疗。当然对于IFI患者需要实施外科治疗的情况还有很多,如骨髓炎、心包炎、中枢神经系统感染引起的颅内脓肿的一些病例等。

附录:IFI的治疗药物简述

与其它抗感染药物不同,目前抗真菌药物在中国市场可选择范围相当有限,并且受限于经济、实验测定条件和医生对真菌感染的认识。具体应用还要结合患者个人情况,并参照药品说明书。

(一)多烯类

1、两性霉素B:①适应证:可用于曲霉、念珠菌、隐球菌、组织胞浆菌等引起的IFI患者;②药代动力学:几乎不被肠道吸收,静脉给药较为理想。血浆结合率高,可通过胎盘屏障、血浆半衰期为24小时。肾脏清除很慢。③用法与用量:静脉给药,每天0.5-1.0mg/kg. ④注意事项:传统的两性霉素B制剂具有严重的肾毒性,需对患者进行严密的肾功能及血钾水平监测。在肾功能显著下降的情况下应予以减量、并应避免与其它肾毒性药物合用。

2、两性霉素B含脂制剂:目前有3种制剂,包括两性霉素B脂质复合体(ABLC)、两性霉素B胶质分散体(ABCD)和两性霉素B脂质体(L-AmB),因其分布更集中于单核-吞噬细胞系统如肝、脾和肺组织,减少了在肾组织的浓度,故肾毒性较两性霉素B去氧胆酸盐降低。抗真菌谱同上,采用脂质体技术制备,价格较昂贵。①适应证: 可用于曲霉、念珠菌、隐球菌、组织胞浆菌等引起的IFI患者;无法耐受传统两性霉素B制剂的患者;肾功能严重损害,不能使用传统两性霉素B 制剂的患者。②药代动力学:非线性动力学,易在肝脏及脾脏中浓集,肾脏中则较少蓄积。③用法与用量: 推荐剂量ABLC为5 mg/kg, ABCD为3-4 mg/kg, L-AmB为3-5 mg/kg。起始剂量为每天1mg/kg,经验治疗的推荐剂量为每天3mg/kg,确诊治疗为每天3或5mg/kg,静脉输注的时间不应少于1h。④注意事项:肾毒性显著降低,输液反应也大大减少,但仍需监测肾功能。

(二)唑类

1、氟康唑:①适应证:深部念珠菌病、急性隐球菌性脑膜炎、侵袭性念珠菌病的预防和治疗。②药代动力学:口服迅速吸收,进食对药物吸收无影响。蛋白结合率低,肾脏清除,血浆半衰期为20-30小时,血中药物可经透析清除。③用法与用量:侵袭性念珠菌病400-800mg/d.念珠菌病的预防:50-200mg/d,疗程不宜超过2-3周。④注意事项:长期治疗者注意肝功能。

2、伊曲康唑:①适应证:曲霉、念珠菌属、隐球菌属和组织胞浆菌等引起的IFI患者。②药代动力学:蛋白结合率99%,血浆半衰期为20-30小时。经肝P450酶系广泛的代谢,代谢产物经胆汁和尿液排泄。③用法与用量:第1-2天200mg,静脉注射,每天2次;第3-14天200mg,静脉注射每天1次;输注时间不得少于1小时;之后序贯使用口服液,200mg每天2次。④注意事项:长期治疗时应注意对肝功能的监测,不得与其他肝毒性药物合用,静脉给药不得与其他药物采用同一通路。

3、伏立康唑:①适应证:免疫抑制患者的严重真菌感染、急性侵袭性曲霉病、由氟康唑耐药的念珠菌引起的侵袭性感染、镰刀霉菌引起的感染等。②药代动力学:高危患者中呈非线性药代动力学,蛋白结合率为58%,组织分布容积为4.6L/kg.清除半衰期为6-9小时。③用法与用量:负荷剂量:静脉给与6mg/kg,每12小时1次,连用2次。输注速度不得超过每小时3mg/kg,在1-2小时内输完。维持剂量:静脉给予4 mg/kg,每12 h 1次。④注意事项:中度至重度肾功能不全患者慎重经静脉给药。

(三)棘白菌素类

1、卡泊芬净:①适应证:发热性中性粒细胞减少患者疑似真菌感染的经验性治疗,并用于治疗侵袭性念珠菌病、念珠菌血症和其他疗法难控制或不能耐受的侵袭性曲霉菌病。②药代动力学:血药浓度与剂量呈等比例增长,蛋白结合率〉96%,清除半衰期为40-50小时。③用法与用量:首日给予一次70mg负荷剂量,随后50mg/d的剂量维持.输注时间不得少于1小时,疗程依患者病情而定。④注意事项:对肝功能受损的患者慎重用药。

2、米卡芬净:是一类新型水溶性棘白菌素类脂肽,它对念珠菌属和曲霉菌属引起的深部真菌感染有广谱抗菌作用,对耐唑类药物的白念珠菌、光滑念珠菌、克柔念珠菌和其他念珠菌均有良好的抗菌活性,但不能抑制新型隐球菌、毛孢子菌属、镰孢属或结合菌。目前主要用于念珠菌属和曲霉菌属所致的深部真菌感染。本品体内分布广泛,血浆和组织浓度较高,主要在肝进行代谢,经胆汁排泄,与其他药物相互作用少。主要的不良反应是肝功能异常,但发生率并不高。其用于治疗食管念珠菌病的推荐剂量为150mg/d,预防造血干细胞移植患者的念珠菌感染的推荐剂量为50mg/d。

(四)氟胞嘧啶

氟胞嘧啶:①适应证:很少单一用药,一般联合两性霉素B应用于全身念珠菌病,隐球菌病。②药代动力学:口服迅速,几乎完全吸收,经口和非胃肠道给药均可达到相同血药浓度,蛋白结合率低,组织分布广泛,经肾脏以原形消除,血浆半衰期为2.5-5.0小时。③用法与用量:若肾功正常,初始剂量50-150mg/kg分四次给药,6小时一次;若肾功不全,初始剂量25mg/kg,但随后的用量和间期需调整以使血清峰值浓度达到70-80mg/L。④注意事项:监测血肌酐水平一周两次,调整合适剂量,规律监测血细胞计数和肝功情况,当与两性霉素B联用时,两性霉素B会使氟胞嘧啶清除率减低。

 

 

 

参考文献:

[1]  Martin GS, Mannino DM, Eaton S, Moss M.The Epidemiology of Sepsis in the United Statesfrom 1979 through 2000. N Engl J Med. 2003; 348:1546-54.

[2]  Edmond MB, Wallace SE, McClish DK, et al. Nosocomial bloodstream infections in United States hospitals: a three-year analysis. Clin Infect Dis. 1999; 29: 239-244.

[3]  Rentz AM, HalpernMT, Bowden R. The impact of candidemia on length of hospital stay, outcome, and overall cost of illness. Clin Infect Dis. 1998; 27: 781-8.

[4] Slavin MA, Australian Mycology Interest Group. The epidemiology of candidaemia and mould Infectious in Australia. J Antimicrob Chemother. 2002; 49 S1: 3-9.

[5]  Kauffman CA.Fungal Infections. Proc Am Thorac Soc. 2006;3(1):35-40

[6]  Tortorano AM, Peman J, Bernhardt H, et al. Epidemiology of candidaemia in europe: results of 28-month European Confederation of Medical Mycology (ECMM) hospital-based surveillance study. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2004 Apr; 23(4): 317-22.

[7]  Meersseman W, Vandecasteele SJ, Wilmer A, et al. Invasive aspergillosis in critically ill patients without malignancy. Am J Respir Crit Care Med. 2004; 170: 621–625.

[8]  Denning DW. Aspergillosis in nonimmunocompromised critically ill patients.  Am J Respir Crit Care Med. 2004; 170: 580-581.

[9]  Garnacho-Montero J, Amaya-Villar R, Ortiz-Leyba C, et al. Isolation of Aspergillus spp. from the respiratory tract in criticallyill patients: risk factors, clinical presentation and outcome. Crit Care 2005; 9: R191-199.

[10] Lewis M, Kallenbach J, Ruff P, et al. Invasive pulmonary aspergillosis complicating influenza A pneumonia in a previously healthy patient. Chest 1985; 87: 691-693.

[11] Karam GH, Griffin FM. Invasive pulmonary aspergillosis in nonimmunocompromised, nonneutropenic hosts. Rev Infect Dis. 1986;8:357-363.

[12] Valles J, Mesalles E, Mariscal D, et al. A 7-year study of severe hospital-acquired pneumonia requiring ICU admission. Intensive Care Med. 2003; 29: 1981-1988.

[13] Vandewoude KH, Blot SI, Depuydt P, et al. Clinical relevance of Aspergillus isolation from respiratory tract samples in critically ill patients. Critical Care. 2006; 10(1):R31

[14] Vandewoude KH, Vogelaers D, Blot SI. Aspergillosis in the ICU—The new 21st century problem? Med Mycol. 2006 Sep;44 Suppl:71-6.

[15] Hartemink KJ, Paul MA, Spijkstra JJ, et al. Immunoparalysis as a cause for invasive aspergillosis? Intensive Care Med. 2003, 29:2068-2071.

[16] Ascioglu S, Rex JH, de Pauw B, et al. Defining opportunistic invasive fungal infections in immunocompromised patients with cancer and hematopoietic stem cell transplants: an international consensus. Clin Infect Dis. 2002; 34: 7-14.

[17] Mermel LA, Farr BM, Sherertz RJ, et al. Guidelines for the Management of Intravascular Catheter–Related Infections. Clin Infect Dis. 2001; 32: 1249-1272.

[18] Leon C, Ruiz-Santana S, Saavedra P, et al. A bedside scoring system ("Candida score") for early antifungal treatment in nonneutropenic critically ill patients with Candida colonization. Crit Care Med. 2006 Mar;34(3):730-7.

[19] Craven DE, Barber TW, Steget KA, et al. Nosocomial pneumonia in the 1990: Update of epidemiology and risk factors. Seninars in Respiratory Infection. 1990; 5(3): 157.

[20] Perfect JR, Cox GM, Lee JY, et al. The impact of culture isolation of Aspergillus species: a hospital-based survey of aspergillosis. Clin Infect Dis. 2001; 33:1824-1833.

[21] Rees JR, Pinner RW, Hajjeh RA, et al. The epidemiological features of invasive mycotic infections in the San FranciscoBayarea, 1992-1993: results of population-based laboratory active surveillance. Clin Infect Dis. 1998; 27: 1138-1147.

[22] Borzotta AP, Beardsley K. Candida infections in critically ill trauma patients: a retrospective case-control study. Arch Surg. 1999; 134:657-64; discussion 664-5.

[23] Hoerauf A, Hammer S, Muller-Myhsok B, et al. Intra-abdominal Candida infection during acute necretizing pancreatitis has a high prevalence and is associated with increased mortality. Crit Care Med. 1998; 26(12):2010-5.

[24] de Vera F, Martinez JF, Clara Verdu R, et al. Pancreatic abscess caused by Candida following wide-spectrum antibiotic treatment. Gastroenterol Hepatol. 1998 Apr;21(4):188-90.

[25] Vandewoude K, Colardyn F, Verschraegen G, et al. Clinical relevance of positive aspergillus cultures in respiratory tract secretions in ICU patients. Program and abstracts of the 44th Interscience Conference of Antimicrobial Agents and Chemotherapy; October 30-November 2, 2004; Washington, DC. Abstract K-1440.

[26] Blumberg HM, Jarvis WR, Soucie JM, et al. Risk factors for candidal bloodstream infections in surgical intensive care unit patients: the NEMIS prospective multicenter study. The National Epidemiology of Mycosis Survey. Clin Infect Dis. 2001; 33: 177-86.

[27] Pittet D, Monod M, Suter PM, et al. Candida colonization and subsequent infections in critically ill surgical patients. Ann Surg. 1994 Dec;220(6):751-8.

[28] Piarroux R, Grenouillet F, Balvay P, et al. Assessment of preemptive treatment to prevent severe candidiasis in critically ill surgical patients.Crit Care Med 2004;32(12):2443-2449.

[29] Ostrosky-Zeichner L, Pappas PG. Invasive candidiasis in the intensive care unit.  Crit Care Med. 2006; 34(3): 857-863.

[30] Petri MG, Konig J, Moecke HP, et al. Epidemiology of invasive mycosis in ICU patients: a prospective multicenter study in 435 non-neutropenic patients. Paul-Ehrlich Society for Chemotherapy, Divisions of Mycology and Pneumonia Research.. Intensive Care Med. 1997 Mar;23(3):317-25.

[31] Linda W, Kam, Jason D. Management of systemic candidal infections in the intensive care unit. Am J Health-Syst Pharm. 2002: 59; 33-41.

[32] Wey SB, Motomi M, Pfaller MA. et al. Risk factors for hospital acquired candidemia. Arch Intern Med. 1989; 149:2349-53.

[33] Vandewoude K, Blot S, Benoit D, et al. Invasive aspergillosis in critically ill patients: analysis of risk factors for acquisition and mortality. Acta Clin Belg. 2004; 59:251-257.

[34] Pittet D, Huguenin T, Dharan S, et al. Unusual cause of lethal pulmonary aspergillosis in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 1996; 154(2Pt1): 541-544.

[35] Rello J, Esandi ME, Mariscal D, et al. Invasive pulmonaryaspergillosis in patients with chronic obstructive pulmonarydisease: report of eight cases and review. Clin Infect Dis. 1998;26: 1473-1475.

[36] Bulpa PA, Dive AM, Garrino MG, et al. Chronic obstructive pulmonary disease patients with invasive pulmonary aspergillosis:benefits of intensive care? Intensive Care Med. 2001; 27: 59-67.

[37] Lionakis MS, Kontoyiannis DP. Glucocorticoids and invasive fungal infections. Lancet. 2003;362:1828-1838.

[38] Crean JM, Niederman MS, Fein AM, Feinsilver SH. Rapidly progressive respiratory failure due to Aspergillus pneumonia: a complication of short-term corticosteroid therapy. Crit Care Med. 1992; 20: 148-150.

[39] Palmer LB, Greenberg HE, Schiff MJ. Corticosteroid treatment as a risk factor for invasive aspergillosis in patients with lung disease. Thorax. 1991; 46:15-20.

[40] Rex JH, Walsh TJ, Sobel JD, et al. Practice guidelines for the treatment of candidiasis. Clin Infect Dis. 2000; 30:662-678.

[41] Vincent JL, Anaissie E, Bruining H, et al. Epidemiology, diagnosis and treatment of systemic Candida infection in surgical patients under intensive care. Intensive Care Med. 1998; 24:206-16.

[42] 中华内科杂志编辑委员会. 血液病/恶性肿瘤患者侵袭性真菌感染的诊断标准与治疗原则(草案). 中华内科杂志. 2005; 44: 554-556.

[43] 中华内科杂志编辑委员会. 侵袭性肺部真菌感染的诊断标准与治疗原则(草案). 中华内科杂志. 2006; 45(8): 697-700.

[44] Stevens DA, Kan VL, Judson MA, et al. Practice guidelines for diseases caused by Aspergillus. Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis, 2000; 30: 696-709.

[45] Pappas PG, Rex JH, Sobel JD, et al. Guidelines for treatment of candidiasis. Clin Infect Dis,2004,38:161-189.

[46] Singh N, Paterson DL. Aspergillus Infections in Transplant Recipients. Clinical microbiology reviews. 2005; 18(1): 44-69.

[47] Patel R, Portela D, Badley AD, et al. Risk factors of invasive Candida and non2Candida fungal infections after liver transplantation. Transplantation. 1996; 62 (7): 926-934.

[48] Kusne S, Torre-Cisneros J, Manez R, et al. Factors associated with invasive lung aspergillosis and the significance of positive aspergillus culture after liver transplantation. J Infect Dis. 1992; 166: 1379-1383.

[49] Ruffini E, Baldi S, Rapellino M, et al . Fungal infections in lung transplantation. Incidence, risk factors and prognostic significance. Sarcoidosis Vasc Diffuse Lung Dis. 2001; 18 (2): 181-190.

[50] Segal BH, Walsh TJ. Current approaches to diagnosis and treatment of invasive aspergillosis. Am J Respir Crit Care Med. 2006 Apr 1; 173(7):707-17.

[51] Paterson DL, Singh N. Invasive aspergillosis in transplant recipients. Medicine (Baltimore). 1999; 78: 123-138.

[52] Kuhlman JE, Fishman EK, Siegelman SS. Invasive pulmonary aspergillosis in acute leukemia: characteristic findings on CT, the CT halo sign, and the role of CT in early diagnosis. Radiology. 1985; 157: 611-614.

[53] Greene RE, Schlamm HT, Stark P, et al. Radiological findings in acute invasive pulmonary aspergillosis: utility and reliability of halo sign and air-crescent sign for diagnosis and treatment of invasive pulmonary aspergillosis in high-risk patients. Clin Microbiol Infect 2003, 9(Suppl 1):O397.

[54] Munoz P, Guinea J, Bouza E. Update on invasive aspergillosis: clinical and diagnostic aspects. Clin Microbiol Infect. 2006; 12 (suppl 7): 24-39.

[55]卫生部医政司医院内感染监控协调小组. 医院感染的诊断标准. 中华医院管理杂志. 1990; 6(5): 306.

[56] Schimmelpfennig C, Naumann R, Zuberbier T, et al. Skin involvement as the first manifestation of systemicaspergillosis in patients after allogeneic hematopoietic cell transplantation. Bone Marrow Transplant. 2001; 27: 753-755.

[57] Schelenz S, Goldsmith DJ. Aspergillus endophthalmitis: an unusual complication of disseminated infection in renal transplant patients. J Infect. 2003; 47: 336-343.

[58] Chamilos G, Kontoyiannis DP. Defining the diagnosis of invasive aspergillosis. Med Mycol. 2006 Sep; 44 Suppl:163-72.

[59] Ho KM, Rochford SA, John G. The use of topical nonabsorbable gastrointestinal antifungal prophylaxis to prevent fungal infections in critically ill immunocompetent patients:A meta-analysisCrit Care Med. 2005 Oct;33(10):2383-92.

[60] Winston DJ, Pakrasi A, Busuttil RW. Prophylactic Fluconazole in Liver Transplant Recipients Ann Intern Med. 1999;131: 729-737.

[61] Benedetti E, Gruessner AC, Troppmann C, et al. Intra-abdominal fungal infections after pancreatic transplantation: incidence, treatment, and outcome. J Am Coll Surg. 1996 Oct;183(4):307-16.

[62] Vardakas KZ, Samonis G, Michalopoulos A, et al. Antifungal prophylaxis with azoles in high-risk, surgical intensive care unit patients:A meta-analysis of randomized, placebo-controlled trial. Crit Care Med 2006;34(4):1216-1224.

[63] Pelz RK, Hendrix CW, Swoboda SM, et al. Double-Blind Placebo-Controlled Trial of Fluconazole to Prevent Candidal Infections in Criticaaly ill Surgical Patients. Annals of Surgery.2001;233(4):542-548.

[64]Garbino J, Lew DP, Romand JA, et al. Prevention of severe Candida infections in nonneutropenic, high-risk, critically ill patients: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial in patients treated by selective digestive decontamination. Intensive Care Med. 2002 Dec; 28(12):1708-17.

[65] Jacobs S, Price Evans DA, Tariq M, Al Omar NF. Fluconazole improves survival in septic shock: a randomized double-blind prospective study.Crit Care Med. 2003Jul; 31(7):1938-46.

[66] Philippe E, Patrick F, Jacques B, et al. Fluconazole prophylaxis prevents intra-abdominal candidiasis in high-risk surgical patients. Critical Care Medicine 1999;27(6), 1066-1072.

[67] Potter M. Strategies for managing systemic fungal infection and the place of itraconazole. Journal of Antimicrobial Chemotherapy.2005:56Suppl(S1):i49-i54. 

[68] Husain S, Paterson DL, Studer S, et al. Voriconazole prophylaxis in lung transplant recipients. Am J Transplant. 2006 Dec;6(12):3008-16

[69] Siwek GT, Pfaller MA, Polgreen PM, et al. Incidence of invasive aspergillosis among allogeneic hematopoietic stem cell transplant patients receiving voriconazole prophylaxis. Diagn Microbiol Infect Dis. 2006 Jul;55(3):209-12.

[70] Mattiuzzi GN, Alvarado G, Giles FJ, et al. Open-Label, Randomized Comparison of Itraconazole versus Caspofungin for Prophylaxis in Patients with Hematologic Malignancies. Antimicrob Agents Chemother. 2006 Jan;50(1):143-7.

[71] van Burik JA, Ratanatharathorn V, Stepan DE, et al; National Institute of Allergy and Infectious Diseases Mycoses Study Group. Micafungin versus Fluconazole for Prophylaxis against Invasive Fungal Infections during Neutropenia in Patients Undergoing Hematopoietic Stem Cell Transplantation. Clinical Infections Diseases. 2004; 39:1407-16.

[72] Rousey SR, Russler S, Gottlieb M, Ash RC. Low-dose amphotericin B prophylaxis against invasive Aspergillus infections in allogeneic marrow transplantation The American Journal of Medicine 199191(5): 484-492

[73] Kelsey SM, Goldman JM, McCann S, et al. Liposomal amphotericin (Ambisome) in the prophylaxis of fungal infections in neutropenic patients:a randomized, double-blind, placebo-controlled study. Bone Marrow Transplantation,1999;23:163-168.

[74] Fortun J, Martin-Davila P, Moreno S, et al.Prevention of invasive fungal infections in liver transplant recipients: the role of prophylaxis with lipid formulations of amphotericin B in high-risk patients. J Antimicrob Chemother. 2003 Nov;52(5):813-9.

[75] Singh N, Paterson DL, Gayowski T, et al. Preemptive prophylaxis with a lipid preparation of amphotericin B for invasive fungal infections in liver transplant recipients requiring renal replacement therapy.Transplantation. 2001;71(7):910-913.

[76] Lopez-Medrano F, Diaz-Pedroche C, Lumbreras C, Aguado JM. Usefulness of liposomal amphotericin B for the prophylaxis of fungal infection in solid organ transplant recipients. Rev Esp Quimioter. 2005 Mar;18(1):14-20.

[77] Segal BH, Almyroudis NG, Battiwalla M, et al. Prevention and Early Treatment of Invasive Fungal Infection in Patients with Cancer and Neutropenia and in Stem Cell Transplant Recipients in the Era of Newer Broad-Spectrum Antifungal Agents and Diagnostic Adjuncts. Clinical Infectious Diseases 2007; 44:402–9. 

[78] Marr KA. Empirical antifungai therapy —new options, new tradeoffs. N Engl J Med; 346: 278-280.

[79] Viscoli C, Castagnola E, Van Lint MT, et al. Fluconazole versus amphotericin B as empirical antifungal therapy of unexplained fever in granulocytopenic cancer patients: a pragmatic, multicentre, prospective and randomised clinical trial. Eur J Cancer. 1996 May;32A(5):814-20.

[80] Malik IA, Moid I, Aziz Z,et al. A randomized comparison of fluconazole with amphotericin B as empiric anti-fungal agents in cancer patients with prolonged fever and neutropenia. Am J Med. 1998 Dec;105(6):478-83.

[81] Winston DJ, Hathorn JW, Schuster MG, et al. A multicenter, randomized trial of fluconazole versus amphotericin B for empiric antifungal therapy of febrile neutropenic patients with cancer. Am J Med. 2000 Mar;108(4):282-9.

[82] Boogaerts M, Winston DJ, Bow E, et al. Intravenous and oral itraconazole versus intravenous amphotericin B deoxycholate as empirical antifungal therapy for persistent fever in neutropenic patients with cancer who are receiving broad-spectrum antibacterial therapy. Ann Intern Med 2001; 135: 412–22.

[83] Walsh TJ, Pappas P, Winston DJ, Lazarus HM, Petersen F, et al. Voriconazole compared with liposomal amphotericin B for empirical antifungal therapy in patients with neutropenia and persistent fever. N Engl J Med 2002; 346: 225–34.

[84] Walsh TJ, Teppler H, Donowitz GR, et al. Caspofungin versus liposomal amphotericin B for empirical antifungal therapy in patients with persistent fever and neutropenia. N Engl J Med 2004;351:1391–402.

[85] Walsh TJ, Finberg RW, Arndt C, Hiemenz J, Schwartz C, Bodensteiner D, et al. Liposomal amphotericin B for empirical therapy in patients with persistent fever and neutropenia. N Engl J Med 1999;340:764–71.

[86] Cordonnier C, Pautas C, Maury S, et al. Empirical Versus Pre-Emptive Antifungal Therapy in High-Risk Febrile Neutropenic Patients: A Prospective Randomized Study. Blood. 2006; 108: Abstract 2019.

[87]SchwarzingerM, BeauchampC, MauryS, et al. Empirical Versus Pre-Emptive Antifungal Therapy in High-Risk Febrile Neutropenic Patients: An Economic Analysis. Blood. 2006; 108: Abstract 2021.

[88]Maertens J, Deeren D, Dierickx D, et al. Preemptive antifungal therapy: still a way to go. Curr Opin Infect Dis. 2006 Dec; 19(6):551-6.

[89] Herbrecht R, Denning DW, Patterson TF, et al. Voriconazole versus amphotericin B for primary therapy of invasive aspergillosis. N Engl J Med 2002; 347: 408–15.

[90] Leenders AC, Daenen S, Jansen RL, et al. Liposomal amphotericin B compared with amphotericin B deoxycholate in the treatment of documented and suspected neutropenia-associated invasive fungal infections. Br J Haematol 1998;103: 205–12.

[91] Bowden R, Chandrasekar P, White MH, Li X, Pietrelli L, Gurwith M, et al. A double-blind, randomized, controlled trial of amphotericin B colloidal dispersion versus amphotericin B for treatment of invasive aspergillosis in immunocompromised

patients. Clin Infect Dis 2002;35:359–66.

[92] Maertens J, Raad I, Petrikkos G, Boogaerts M, et al. Efficacy and safety of caspofungin for treatment of invasive aspergillosis in patients refractory to or intolerant of conventional antifungal therapy. Clin Infect Dis. 2004;39:1563–71.

[93] Kontoyiannis DP, Hachem R, Lewis RE, et al. Efficacy and toxicity of caspofungin in combination with liposomal amphotericin B as primary or salvage treatment of invasive aspergillosis in patients with hematologic malignancies. Cancer 2003;98:292–9.

[94] Marr KA, Boeckh M, Carter RA, Kim HW, Corey L. Combination antifungal therapy for invasive aspergillosis. Clin Infect Dis 2004;39:797–802.

[95] Slavin MA, Szer J, Grigg AP, et al. Guidelines for the use of antifungal agents in the treatment of invasive Candida and mould infections. Intern Med J. 2004; 34: 92-200.

[96] John RW, Helen L. A New Era of Antifungal Therapy. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 2004; 10:73-90 .

[97] Girois SB, Chapuis F, Decullier E, et al. Adverse effects of antifungal therapies in invasive fungal infections: review and meta-analysis.  Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2006, 25: 138–149.

[98] Dismukes WE. Introduction to Antifungal Drugs. Clinical Infectious Diseases, 2000, 30:653–65.

[99] Song JC, Deresinski S. Hepatotoxicity of antifungal agents. Current Opinion in Investigational Drugs, 2005, 6: 170-177.

[100] Bekersky I, Fielding RM, DresslerDE. Plasma Protein Binding of Amphotericin B and Pharmacokinetics of Bound versus Unbound Amphotericin B after Administration of Intravenous Liposomal Amphotericin B (AmBisome) and Amphotericin B Deoxycholate. Antimicrobial Agents And Chemotherapy. Mar. 2002, p. 834–840.

[101] Walsh TJ, Hiemenz JA, Seibel NL, et al. Amphotericin B lipid complex for invasive fungal infections: analysis of safety and efficacy in 556 cases. Clin Infect Dis.1998; 26:1383-1396.

[102] Heinemann V, Bosse D, Jehn U et al. Pharmacokinetics of liposomal amphotericin B (Ambisome) in critically ill patients. Antimicrob Agents Chemother. 1997; 41:1275-1280.

[103] ClarkAD, McKendrick S, Tansey PJ. Comparative analysis of lipid-complexed and liposomal amphotericin B preparations in haematological oncology. Br J Haematol. 1998; 103: 198-204.

[104] Garcia LA, Duque A, Castellsague J, et al. Acohort Studyon the risk of acute liver injury among users of ketoconazole and other antifungal drugs. Br J Clin Pharmacol. 1999, 48: 847-852.

[105] Townsend R, Hebert M, Dessimoz M, et al. Pharmacokinetics(PK) of micafungin, an echinocandin antifungal, in subjects with moderate hepatic dysfunction (MHD). J Clin Pharmacol. 2002; 42: 1054-1059.

[106] Pettengell K, Mynhardt J, Kluyts T, et al. Successful treatment of esophageal candidiasis by micafungin: a novel systemic antifungal agent. Aliment Pharmacol. 2004; 36: 372.

[107] Eriksson U, Seifert B, Schaffner A. Comparison of effects of amphotericin B deoxycholate infused over 4 or 24 hours: randomised controlled trial. Br Med J 2001; 322: 579–82.

[108] Imhof A, Walter RB, Schaffner A. Continuous infusion of escalated doses of amphotericin B deoxycholate: an open-label observational study. Clin Infect Dis 2003;36:943-951.

[109] Speich R, Dutly A, Naef R, Russi EW, Weder W, Boehler A. Tolerability, safety and efficacy of conventional amphotericin B administered by 24-hour infusion to lung transplant recipients. Swiss Med Wkly 2002;132:455-458.

[110] Klastersky J. Antifungal therapy in patients with fever and neutropenia —more rational and less empirical? N Engl J Med 2004;351:1445-1447.

[111] Wingard JR, Kubilis P, Lee L. et al. Clinical significance of nephrotoxicity in patients treated with amphotericin B for suspected or proven aspergillosis. Clin Infect Dis. 1999; 29:1402-1407.

[112] Dimitrios P, Kontoyiannis, Russell E, Lewis. Caspofungin versus Liposomal Amphotericin B for Empirical Therapy N EnglJ Med. 2005; 352: 410- 414.

[113] Mohr JF, Finkel KW, John H, et al. Pharmacokinetics of Intravenous Itraconazole in Stable Hemodialysis Patients. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 2004, 48: 3151–3153.

[114] Joy MS, Matzke GR, Armstrong DK, et al. A Primer on Continuous Renal Replacement Therapy for Critically Ill Patients. Ann Pharmacother. 1998;32:362-75.

[115] Trotman RL, Williamson JC, Shoemaker DM, et al. Antibiotic dosing in critically ill adult patients receiving continuous renal replacement therapy. Clin Infect Dis. 2005; 8: 1159-1166.

[116] Steinbach WJ, Stevens DA. Review of Newer Antifungal and Immunomodulatory Strategies for Invasive Aspergillosis. Clinical Infectious Diseases. 2003; 37: S157–87.

[117] Giles FJ. Monocyte-macrophages, granulocyte-macrophage colony stimulating factor, and prolonged survival among patients with acute myeloid leukemia and stem cell transplants. Clin Infect Dis 1998;26:1282–1289.

[118] Denning DW, Stevens DA. Antifungal and surgical treatment of invasive

aspergillosis: review of 2121 published cases. Rev Infect Dis 1990; 12: 1147–201.

[119] Habicht JM, Passweg J, Kuhne T. et al. Successful local excision and long-term survival for invasive pulmonary aspergillosis during neutropenia after bone marrow transplantation. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 2000; 119:1286-7.

[120] Stammberger H. Endoscopic surgery for mycotic and chronic recurring sinusitis. Ann Otol Rhinol Laryngol Suppl 1985; 119:1–11.

[121] Wiatrak BJ,Wilging P, Myer CM, et al. Functional endoscopic sinus surgery

in the immunocompromised child. Otolaryngol Head Neck Surg 1991;105:818–25.

[122] Muehrcke DD, Lytle BW, Cosgrove DM 3rd. Surgical and long-term antifungal therapy for fungal prosthetic valve endocarditis. Ann Thorac Surg 1995; 60:538–43.

 

 

 



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